DOI: https://doi.org/10.18524/2077-1746.2019.1(44).167874

ВПЛИВ ЦИТРАТІВ ВАНАДІЮ ТА ХРОМУ НА АНТИОКСИДАНТНУ СИСТЕМУ В КРОВІ ЩУРІВ ІЗ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНИМ ДІАБЕТОМ

О. О. Сушко, Р. Я. Іскра

Анотація


Показано, що попереднє внесення до раціону щурів із експериментальним діабетом цитратів ванадію та хрому, призводить до нормалізації у крові вмісту продуктів пероксидного окиснення ліпідів та активності ензимів антиоксидантного захисту. Тому можна розглядати дані цитрати в якості профілактичного застосування для уповільнення прогресування цукрового діабету та ризику ускладнень.


Повний текст:

PDF

Посилання


Vlizlo V. V., Fedoruk R. S., Ratych I. B. (2012) Laboratory methods of research in biology, veterinary medicine: a guide [Laboratorni metody doslidzhen u biolohiyi, tvarynnytstvi ta veterynarniy medytsyni], Spolom, Lviv, 764 p.

Hnativ V. V., Demchak Kh. S., Babulenko O. M. (2013) “Reactive oxygen species in the pathogenesis of angiopathy at diabetes mellitus of type 2” [“Aktivnі formi kisnju v patogenezі angіopatіj pri cukrovomu dіabetі 2­go tipu”], Med himija, 1, 54, pp. 145-149.

Danchenko N., Polyakova V., Babak V., Veselskiy S., Salata I., Tsudzevych B. (2013). “Effect aloksanu on some characteristics of carbohydrate and energy metabolism in rats” [“Vpliv aloksanu na dejakі harakteristiki vuglevodnogo ta energetichnogo obmіnu u shhurіv”], Vіsnik Kiїvs'kogo nacіonal'nogo unіversitetu іmenі Tarasa Shevchenka, 16, pp. 56-57.

Korobeynikova S. N. (1989). “Modification of definition of lipid peroxidation products in reaction with thiobarbituric acid” [“Modifikacija opredelenija produktov POL v reakcii s tiobarbiturovoj kislotoj”], Laboratornoye Delo, 7, pp. 8-9.

Korolyuk, M. A., Ivanova, M. I., Maiorova I. T., Tokarev, V. E. (1988) “Method for determination of catalase activity” [“Metod opredelenija aktivnosti katalazy”], Laboratornoye Delo, 1, pp. 16-19.

Lanovets І. І., Timchenko A. S., Tsugorkaya T. M. (2012) “Glutathione and oxidative stress” [“Glutatіon і oksidativnij stress”]. Gematologіja і perelivannja krovі, 1, 36, pp. 168-177.

Mironchik V. V. (1998). Method of determining the content of lipid hydroperic acids in biological tissues [Sposob opredeleniya gidroperekisey lipidov v biologicheskikh tkanyakh]. Avtorskoye svidetel'stvo №1084681 SSSR, MKI G №33/48. (SSSR). №3468369/2813; Byul. №13.

Moin V. M. (1996). “A simple and specific method for the determination of glutathione peroxidase in erythrocytes” [“Prostoj i specificheskij metod opredelenija aktivnosti glutationperoksidazy v jeritrocitah”], Laboratornoye Delo, 12, pp. 724-727.

Bansal A. K, Bilaspuri G. S. (2011). Impacts of oxidative stress and antioxidants on semen functions. Vet. Med. Int, 7. doi: 10.4061/2011/686137.

Bergmeyer H. U., Gawehn K., Grassl M. (1971). Methods of Enzymatic Analysis. Verlag Chemie, 1, pp. 481-482.

Chandirasegaran G., Elanchezhiyan C., Ghosh K. (2018). Effects of Berberine chloride on the liver of streptozotocin-induced diabetes in albino Wistar rats. Biomedicine & Pharmacotherapy, 99, pp. 227-236. doi:10.1016/j.biopha.2018.01.007.

Chen Y., Watson H. M., Gao J., Sinha S. H., Cassady C. J., Vincent J. B. (2011). Characterization of the organic component of low-molecularweight chromium-binding substance and its binding of chromium, J Nutr, 141, 7, pp. 1225-1232. doi: 10.3945/jn.111.139147.

Domingo J. L., Gomez M. (2016). Vanadium compounds for the treatment of human diabetes mellitus: a scientific curiosity? A review of thirty years of research. Food Chem Toxicol, 95, pp. 137-141. doi: 10.1016/j.fct.2016.07.005.

González-Villalva A., Bizarro-Nevares P., Rojas-Lemus М., Rodríguez-Lara V., García-Pelaez I., Ustarroz-Cano M., López-Valdez N., Albarrán-Alonso J. C., Fortoul T. I. (2016). Pollution by metals: is there a relationship in glycemic control? Environ Toxicol Pharmacol, 46, pp. 337-343. doi: 10.1016/j.etap.2016.06.023.

Hiromura M., Nakayama A., Adachi Y., Doi M., Sakurai H. (2007). Action mechanism of bis(allixinato)oxovanadium(IV) as a novel potent insulin-mimetic complex: regulation of GLUT4 translocation and FoxO1 transcription factor. J Biol Inorg Chem, 12, 8, pp. 1225-1287.

Kakkar R., Kalra J., Mantha S. V., Prasad K. (1995). Lipid peroxidation and activity of antioxidant enzymes in diabetic rats. Mol. Cell Biochem, 151, 2, pp. 113-119.

Kalinina E. V., Chernov N. N., Novichkova M. D. (2014). Role of glutathione, glutathione transferase, and glutaredoxin in regulation of redox-dependent processes. Biochemistry, 79, 19, pp. 1562-1583. doi: 10.1134/S0006297914130082.

Kim A. D., Zhang R., Kang K.A., You H.J., Hyun J.W. (2011). Increased glutathione synthesis following Nrf2 activation by vanadyl sulfate in human chang liver cells. Inter J Mol Sciences, 12, 12, pp. 8878-8894. doi: 10.3390/ijms12128878.

Kumawat M., Sharma T. K., Singh I., Singh N., Ghalaut V. S., Vardey S. K., Shankar S. V. (2013). Antioxidant Enzymes and Lipid Peroxidation in Type 2 Diabetes Mellitus Patients with and without Nephropathy. No Am J Med Sci, 5, 3, pp. 213-219. doi: 10.4103/1947-2714.109193.

Mahendra D., Sachin Somwanshi D., Sandeep Ghuge H., Nagane N. S. (2014). Oxidative Stress in Type II Diabetes Mellitus. Biomedical Research, 25, 1, pp. 84-87.

Rohilla A., Ali S. (2012). Alloxan Induced Diabetes: Mechanisms and Effects. Int. J. Res. Pharma Biomedical Sci, 3, 21, pp. 819-823.

Rosenbloom A. L. (2007). Hyperglycemia crises and their complications in children. J. Pediatr. Endocrinol. Metab., 20, 1, pp. 5-18.

Tiwari B. K., Pandey K. B., Abidi A. B., Rizvi S. I. (2013). Markers of oxidative stress during diabetes mellitus. J Biomark. doi:10.1155/2013/378790.

Vincent J. B. (2013). Chromium: is it essential, pharmacologically relevant, or toxic? Met Ions Life Sci. V.13, pp. 171-198. doi: 10.1007/978-94-007-7500-8_6.

Xie M. J., Yang X. D., Liu W. P., Yan S.P., Meng Z. H. (2010). Insulin-enhancing activity of a dinuclear vanadium complex: 5-chloro-salicylaldhyde ethylenediamine oxovanadium(V) and its permeability and cytotoxicity, J Inorg Biochem, 104, pp. 851-857. doi:10.1016/j.jinorgbio.2010.03.018.


Пристатейна бібліографія ГОСТ


1. Влізло В. В. Лабораторні методи досліджень у біології, тваринництві та ветеринарній медицині: Довідник / В. В. Влізло, Р. С. Федорук, І. Б. Ратич та ін.; За ред. В. В. Влізла. – Львів : Сполом, 2012. – 764 с.

2. Гнатів В. В. Активні форми кисню в патогенезі ангіопатій при цукровому діабеті 2­го типу / В. В. Гнатів, Х. С. Демчак, О. М. Бабуленко // Медична хімія. – 2013. – 15, № 1 (54). – С. 145–149.

3. Данченко Н. Вплив алоксану на деякі характеристики вуглеводного та енергетичного обміну у щурів / Н. Данченко, В. Полякова, В. Бабак, С. Весельський, І. Салата, Б. Цудзевич // Вісник Київського національного університету імені Тараса Шевченка. – 2013. – № 16. – С. 56–57.

4. Коробейникова С. Н. Модификация определения ПОЛ в реакции с ТБК / С. Н. Коробейникова // Лаб. дело. – 1989. – № 7. – С. 8–9.

5. Королюк М. А. Метод определения активности каталазы / М. А. Королюк, Л. К. Иванова, И. Г. Майорова, В. А. Токарева // Клиническая лабораторная диагностика. – 1988. – № 1 – С. 44–47.

6. Лановець І. І. Глутатіон і оксидативний стрес / І. І. Лановець, А. С. Тимченко, Т. М. Цугорка // Гематологія і переливання крові. – 2012. – Т. 1, № 36. – С. 168–177.

7. Мирончик В. В. Способ определения содержания гидроперекисей липидов в биологических тканях: Авторское свидетельство №1084681 СССР, МКИ G № 33/48. (СССР). №3468369/2813; заявл. 08.07.82; опубл. 07.04.84. Бюл. No13.

8. Моин В. М. Простой и специфический метод определения глутатионпероксидазы в еритроцитах / В. М. Моин // Лаб. дело. – 1996. – № 12. – С. 724–727.

9. Bansal A. K. Impacts of oxidative stress and antioxidants on semen functions / A. K. Bansal, G. S. Bilaspuri // Vet. Med. Int. – 2011. – № 7. doi: 10.4061/2011/686137.

10. Bergmeyer H. U. Methods of Enzymatic Analysis / H. U. Bergmeyer, K. Gawehn, M. Grassl // Verlag Chemie. – 1974. – Vol. 1. – P. 481–482.

11. Chandirasegaran G. Effects of Berberine chloride on the liver of streptozotocin-induced diabetes in albino Wistar rats / G. Chandirasegaran, C. Elanchezhiyan, K. Ghosh // Biomedicine & Pharmacotherapy. – 2018. – Vol. 99. – P. 227–236. doi:10.1016/j.biopha.2018.01.007.

12. Chen Y. Characterization of the organic component of low-molecular weight chromium-binding substance and its binding of chromium / Y. Chen, H. M. Watson, J. Gao, S. H. Sinha, C. J. Cassady, J. B. Vincent // J Nutr. – 2011. – Vol. 141, № 7. – P. 1225–1232. doi: 10.3945/jn.111.139147.

13. Domingo J. L. Vanadium compounds for the treatment of human diabetes mellitus: a scientific curiosity? A review of thirty years of research / J. L. Domingo, M. Gomez // Food Chem Toxicol. – 2016. – Vol. 95. – P. 137–141. doi: 10.1016/j.fct.2016.07.005.

14. González-Villalva A. Pollution by metals: is there a relationship in glycemic control? / A. González-Villalva, L. Colín-Barenque, P. Bizarro-Nevares, М. Rojas-Lemus, V. Rodríguez-Lara, I. García-Pelaez, М. Ustarroz-Cano, N. López-Valdez, J. C. Albarrán-Alonso, T. I. Fortoul // Environ Toxicol Pharmacol. – 2016. – Vol. 46. – P. 337–343. doi: 10.1016/j.etap.2016.06.023.

15. Hiromura M. Action mechanism of bis(allixinato)oxovanadium (IV) as a novel potent insulin-mimetic complex: regulation of GLUT4 translocation and FoxO1 transcription factor / M. Hiromura, A. Nakayama, Y. Adachi, M. Doi, H. Sakurai // J Biol Inorg Chem. – 2007. – Vol. 12, № 8. – P. 1275–1287.

16. Kakkar R. Lipid peroxidation and activity of antioxidant enzymes in diabetic rats / R. Kakkar, J. Kalra, S. V. Mantha, K. Prasad // Mol. Cell Biochem. – 1995. – Vol. 151, № 2. – P. 113–119.

17. Kalinina E. V. Role of glutathione, glutathione transferase, and glutaredoxin in regulation of redox-dependent processes / E. V. Kalinina, N. N. Chernov, M. D. Novichkova // Biochemistry. – 2014. – Vol. 79, № 13. – P. 1562–1583. doi: 10.1134/S0006297914130082.

18. Kim A. D. Increased glutathione synthesis following Nrf2 activation by vanadyl sulfate in human chang liver cells / A. D. Kim, R. Zhang, K. A. Kang, H. J. You, J. W. Hyun // Inter J Mol Sciences. – 2011. – Vol. 12, № 12. – P. 8878–8894. doi: 10.3390/ijms12128878.

19. Kumawat M. Antioxidant enzymes and lipid peroxidation in type 2 diabetes mellitus patients with and without nephropathy / M. Kumawat, T. K. Sharma, I. Singh, N. Singh, V. S. Ghalaut, S. K. Vardey, S. V. Shankar // Am J Med Sci. – 2013. – Vol. 5, №3. – P. 213–219. doi: 10.4103/1947-2714.109193.

20. Mahendra D. Oxidative stress in type II diabetes mellitus / D. Mahendra Bikkad, D. Sachin Somwanshi, H. Sandeep Ghuge, N. S. Nagane // Biomedical Research. – 2014. – Vol. 25, № 1. – P. 84–87.

21. Rohilla A. Alloxan induced diabetes: mechanisms and effects / A. Rohilla, S. Ali // Int. J. Res. Pharma Biomedical Sci. – 2012. – Vol. 3, № 21. – P. 819–823.

22. Rosenbloom A. L. Hyperglycemia crises and their complications in children / A. L. Rosenbloom // J. Pediatr. Endocrinol. Metab. – 2007. – Vol. 20, № 1. – P. 5–18.

23. Tiwari B. K. Markers of oxidative stress during diabetes mellitus / B. K. Tiwari, K. B. Pandey, A. B. Abidi, S. I. Rizvi. J. Biomark. – 2013. doi:10.1155/2013/378790.

24. Vincent J. B. Chromium: is it essential, pharmacologically relevant, or toxic? / J. B. Vincent // Met Ions Life Sci. – 2013. – Vol. 13. – P. 171–198. doi: 10.1007/978-94-007-7500-8_6.

25. Xie M. J. Insulin-enhancing activity of a dinuclear vanadium complex: 5-chloro-salicylaldhyde ethylenediamine oxovanadium (V) and its permeability and cytotoxicity / M. J. Xie, X. D. Yang, W. P. Liu, S. P. Yan, Z. H. Meng // J Inorg Biochem. – 2010. – Vol. 104. – P. 851–857. doi:10.1016/j.jinorgbio.2010.03.018.





Creative Commons License
Ця робота ліцензована Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.